Download fulltext HTML

https://doi.org/10.18502/espoch.v2i2.11196

statistics

  • 418 Abstract Views
  • 228 PDF Views
  • 0 HTML Views

authors

  • Bonny Daianhara Mañay Maquisaca

    Bonny Daianhara Mañay Maquisaca

    Investigadora independiente
  • Pablo Rigorberto Andino Nájera

    Pablo Rigorberto Andino Nájera

    Carrera de Zootecnia, Facultad de Ciencias Pecuarias, Escuela Superior de Chimborazo, Ecuador
  • Diego Fabián Maldonado Arias

    Diego Fabián Maldonado Arias

    Carrera de Zootecnia, Facultad de Ciencias Pecuarias, Escuela Superior de Chimborazo, Ecuador
  • Paula Alexandra Toalombo Vargas

    Paula Alexandra Toalombo Vargas

    Carrera de Zootecnia, Facultad de Ciencias Pecuarias, Escuela Superior de Chimborazo, Ecuador

Published Date

  • Jun 14, 2022

Matricaria Chamomilla (Chamomile) and Capsicum Frutescens (Gallinazo Pepper) in Poultry

ESPOCH Congresses: The Ecuadorian Journal of S.T.E.A.M. / Volume 2, Issue 1 / Pages 215-227

Abstract

The current study used Matricaria chamomilla and Capsicum frutescens to evaluate the productive and sanitary parameters in meat birds of the Cobb 500 line in Cumandá, Ecuador. The sample size was 450 broilers divided into two treatments and one control group with three repetitions in each. T0: Control; T1: Matricaria chamomilla extract; and T2: Capsicum frutescens extract. The experimental units were distributed under a completely random design. The productive data obtained were subjected to an analysis of variance (ADEVA), and the separation of means was applied according to the Tukey statistic with significance levels of P ≤0.05 and P ≤ 0.01. Whereas, the health variables were analyzed using descriptive statistics. The productive variables did not present statistically significant differences (P > 0.05) between the treatments and the control. For the health variables, the best treatment was found to be T1, since in the coproparasitic analysis, an average OPG/HPM of 0.67 was observed at 15 days of age; 4.67 at 28 days of age; and 1 at 40 days of age. Regarding the CFUs, values of 107, 264, and 500, respectively, were observed at 15, 28, and 40 days and in turn a better development of intestinal microvilli in the duodenum: 1500.00 μm, jejunum: 1350 μm and ileum: 1000 μm. The cost-benefit was T0: 1.35; T1: 1.14; and T2: 1.29. Therefore, it is important to consider avoiding the use of antibiotic growth promoters to safeguard the health of consumers.


Keywords: poultry, Matricaria chamomilla, Capsicum frutescens, antibiotic growth promoter, Cobb 500.


RESUMEN


En Cumandá–Ecuador, se evaluaron los parámetros productivos y sanitarios en aves de carne de la línea Cobb 500 al aplicar Matricaria chamomilla y Capsicum frutescens, el tamaño de la muestra fue de 450 broilers divididos en dos tratamientos y un testigo con tres repeticiones cada uno; T0: Testigo; T1: Extracto de Matricaria chamomilla; T2:Extracto de Capsicum frutescens. Las unidades experimentales fueron distribuidas bajo un Diseño Completamente al Azar (DCA), los datos productivos obtenidos fueron sometidos a un análisis de varianza (ADEVA), se aplicó la separación de medias según el estadístico Tukey con niveles de significancia (P≤0,05) y (P≤0,01); mientras que las variables sanitarias fueron analizadas mediante estadística descriptiva. Las variables productivas no presentaron diferencias estadísticas significativas (P>0,05) entre los tratamientos y testigo. Para las variables sanitarias se determinó que el mejor tratamiento fue T1, ya que en el análisis coproparasitario, OPG/HPM se observó un promedio de 0,67 a los 15 días de edad; 4,67 a los 28 días de edad; y 1 a los 40 días de edad; en cuanto a las UFC se observó a los 15, 28 y 40 días valores de 107, 264, 500 respectivamente; y a su vez un mejor desarrollo de las microvellosidades intestinales en el duodeno:1500,00 μm, yeyuno:1350 μm e ileon:1000 μm. El B/C costo fue de T0:1,35; T1:1,14; T2:1,29. Es importante considerar, evitar el uso de promotores de crecimiento antibióticos, para salvaguardar la salud de los consumidores.


Palabras Clave: producción aves de carne, Matricaria chamomilla, Capsicum frutescens, promotor de crecimiento antibiótico, Cobb 500.

References
[1] Alviano WS, Alviano DS, Diniz CG et al. In vitro antioxidant potential of medicinal plant extracts and their activities against oral bacteria based on Brazilian folk medicine. Archives of oral biology. 2008;53(6):545-52.

[2] Soria N. Las plantas medicinales y su aplicación en la salud pública. Revista de salud publica del Paraguay. 2018;8(1):7-8.

[3] Tello-Ceron G, Pimentel M, Galarza V. Uso de las plantas medicinales del distrito de Quero, Jauja, Región Junín, Perú. Ecología aplicada. 2019;18(1):11-20.

[4] Davicino R, Mattar MA, Casali YA, Correa SG, Pettenati EM, Micalizzi B. Actividad antifúngica de extractos de plantas usadas en medicina popular en Argentina. Revista peruana de biología. 2007;14(2):247-52.

[5] Maldonado C, Paniagua-Zambrana N, Bussmann RW, Zenteno-Ruiz FS, Fuentes AF. La importancia de las plantas medicinales, su taxonomía y la búsqueda de la cura a la enfermedad que causa el coronavirus (COVID-19). Ecología en Bolivia. 2020;55(1):1- 5.

[6] Gallegos-Zurita M, Gallegos D, editors. Plantas medicinales utilizadas en el tratamiento de enfermedades de la piel en comunidades rurales de la provincia de Los Ríos Ecuador 2017: UNMSM. Facultad de Medicina, Ecuador

[7] Maquisaca M, Daianhara B. Efecto productivo y sanitario de la Matricaria chamomilla (Manzanilla) y el Capsicum frutescens (ají de galinazo), en la Producción de pollos broiller, 2019; ESPOCH. Facultad de Ciencias Pecuarias, Ecuador

[8] Toro D, Aguilar Y, Bertot R, Torres G, Nava O, González C. Análisis preliminar de los metabolitos secundarios de polvos mixtos de hojas de plantas medicinales. Revista Cubana de Plantas Medicinales. 2017;22(1):0.

[9] Pabón LC, Rodríguez MF, Hernández-Rodríguez P. Plantas medicinales que se comercializan en Bogotá (Colombia) para el tratamiento de enfermedades infecciosas. Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas. 2017;16(6):529-46.

[10] Akula R, Ravishankar GA. Influence of abiotic stress signals on secondary metabolites in plants. Plant signaling & behavior. 2011;6(11):1720-31.

[11] Durmic Z, Blache D. Bioactive plants and plant products: Effects on animal function, health and welfare. Animal feed science and technology. 2012;176(1-4):150-62.

[12] Okafor F, Janen A, Kukhtareva T, Edwards V, Curley M. Green synthesis of silver nanoparticles, their characterization, application and antibacterial activity. International journal of environmental research and public health. 2013;10(10):5221- 38.

[13] Bodas R, Prieto N, García-González R, Andrés S, Giráldez FJ, López S. Manipulation of rumen fermentation and methane production with plant secondary metabolites. Animal Feed Science and Technology. 2012;176(1-4):78-93.

[14] Patra AK, Saxena J. A new perspective on the use of plant secondary metabolites to inhibit methanogenesis in the rumen. Phytochemistry. 2010;71(11-12):1198-222.

[15] Santra A, Saikia A, Baruah KK. Scope of rumen manipulation using medicinal plants to mitigate methane production. Journal of Pharmacognosy. 2012;3(2):115-20.

[16] Cieśla Ł, Kowalska I, Oleszek W, Stochmal A. Free radical scavenging activities of polyphenolic compounds isolated from Medicago sativa and Medicago truncatula assessed by means of thin￿layer chromatography DPPH rapid test. Phytochemical Analysis. 2013;24(1):47-52.

[17] Kharissova OV, Dias HVR, Kharisov BI, Pérez BO, Pérez VMJ. The greener synthesis of nanoparticles. Trends in biotechnology. 2013;31(4):240-8.

[18] Geetha AR, George E, Srinivasan A, Shaik J. Optimization of green synthesis of silver nanoparticles from leaf extracts of Pimenta dioica (Allspice). The Scientific World Journal. 2013;2013.

[19] Shanmugasundaram T, Balagurunathan R. Mosquito larvicidal activity of silver nanoparticles synthesised using actinobacterium, Streptomyces sp. M25 against Anopheles subpictus, Culex quinquefasciatus and Aedes aegypti. Journal of Parasitic Diseases. 2015;39(4):677-84.

[20] Raja S, Ramesh V, Thivaharan V. Antibacterial and anticoagulant activity of silver nanoparticles synthesised from a novel source–pods of Peltophorum pterocarpum. Journal of Industrial and Engineering Chemistry. 2015;29:257-64.

[21] Lateef A, Akande MA, Ojo SA, Folarin BI, Gueguim-Kana EB, Beukes LS. Paper wasp nest-mediated biosynthesis of silver nanoparticles for antimicrobial, catalytic, anticoagulant, and thrombolytic applications. 3 Biotech. 2016;6(2):1-10.

[22] David L, Moldovan B, Vulcu A et al. Green synthesis, characterization and antiinflammatory activity of silver nanoparticles using European black elderberry fruits extract. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2014;122:767-77.

[23] Mani AKM, Seethalakshmi S, Gopal V. Evaluation of in-vitro anti-inflammatory activity of silver nanoparticles synthesised using piper nigrum extract. Journal of Nanomedicine & Nanotechnology. 2015;6(2):1.

[24] Satyal P, Shrestha S, Setzer WN. Composition and bioactivities of an (E)-β-farnesene chemotype of chamomile (Matricaria chamomilla) essential oil from Nepal. Natural product communications. 2015;10(8):1934578X1501000835.

[25] Caleja C, Barros L, Antonio AL et al. Development of a functional dairy food: Exploring bioactive and preservation effects of chamomile (Matricaria recutita L.). Journal of functional foods. 2015;16:114-24.

[26] Abdoul-Latif FM, Mohamed N, Edou P et al. Antimicrobial and antioxidant activities of essential oil and methanol extract of Matricaria chamomilla L. from Djibouti. Journal of Medicinal Plants Research. 2011;5(9):1512-7.

[27] Consuelo J, Guerrero R. Efecto antimicrobiano de la mezcla del extracto de llantén y manzanilla comparado con clorhexidina en cepas de porphyromona gingivalis. 2021.

[28] Patra AK, Saxena J. Exploitation of dietary tannins to improve rumen metabolism and ruminant nutrition. Journal of the Science of Food and Agriculture. 2011;91(1):24-37.

[29] Dimitrios B. Sources of natural phenolic antioxidants. Trends in food science & technology. 2006;17(9):505-12.

[30] Olatunji TL, Afolayan AJ. Comparative Quantitative Study on Phytochemical Contents and Antioxidant Activities of Capsicum annuum L. and Capsicum frutescens L. The Scientific World Journal. 2019;2019:4705140.

[31] Bonilla YC, Estrella VM, Quintero MF. Comparación de resultados de investigación publicados en revistas científicas sobre la actividad antimicrobiana de extractos naturales de M. chamomilla, P. guajava y O. vulgare. 2021. Universidad CES. Facultad de Ciencias y Biotecnología. Medellín Colombia

[32] Caiza MA. Efecto del extracto de Melissa Officinalis (Toronjil) en la producción de pollos broilers. 2016. Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Riobamba.

[33] Zambrano RA. Evaluación del promotor de crecimiento hematofos b 12 administrado vía oral en Pollos de engorde en la ciudad de Babahoyo. 2012. Repositorio Universidad Técnica de Babahoyo, Babahoyo

[34] Román JR. Utilización de aji de gallinazo capsicum frutescens como micostatico en el engorde de pollos parrilleros. 2014. Universidad Técnica de Machala, Machala

[35] Mancero FJ. Metionina orgánica en reemplazo a la DL-Metionina en pollos. 2014. ESPOCH. Riobamba

[36] Pinos L, Gerónimo M. Aceites esenciales y fenoles de Allium sativum. Var. paisana (Ajo) en la producción de pollos broiler. 2016. ESPOCH. Riobamba

[37] Simba DD, Caluña NE. Efectos de la harina de ají (Capsicum annuum) en diferentes niveles suministrados en la dieta y su comparación con valores hematológicos en la fase de crecimiento y engorde de pollos cobb 700. 2017. Universidad Estatal de Bolívar. Bolívar

[38] Vélez JM. Utilización de hierba luisa (Cymbopogon citratus) e infusión de oreganon (Plectranthus amboinicus) como prebiótico en el levante de pollos broilers. 2017. Universidad de Guayaquil.

[39] Aguagallo H, Rosendo Á. Aceites esenciales y compuestos fenólicos de la Matricaria chamomilla (Manzanilla) en la producción de pollos pio pio. 2016. ESPOCH. Riobamba

[40] Diaz LE, Rivera OF. Efecto del Promotor L® sobre los indicadores productivos de pollos Cobb500® mixto. 2017. Universidad Zamorano. Honduras.

[41] Sanchez MI. Aceites esenciales y fenoles de Allium cepa Var. Red creole (Cebolla Morada) en la producción de pollos broiler. 2016. ESPOCH. Riobamba. http://dspace. espoch. edu. ec/bitstream/123456789/5322/1.

[42] Arias A, González L. Síndrome de muerte súbita en pollos de engorde (broilers). Fundamentos bioquímicos de los trastornos metabólicos. 2017. Universidad Nacional de Colombia. Medellín

[43] Moncada–Mapelli E, Salazar-Granara A. Medicina tradicional y COVID-19, oportunidad para la revaloración de las Plantas Medicinales Peruanas. Revista del Cuerpo Médico Hospital Nacional Almanzor Aguinaga Asenjo. 2020;13(1):103-4.

[44] Alvarez-Quiroz V, Caso-Barrera L, Aliphat-Fernández M, Galmiche-Tejeda Á. Plantas medicinales con propiedades frías y calientes en la cultura Zoque de Ayapa, Tabasco, México. Boletín Latinoamericano y del Caribe de plantas medicinales y aromáticas. 2017;16(4):428-54.

[45] Alder M, Garcilazo MG, Bigatti R, Bellini N. Evaluación de parámetros productivos y bienestar animal de cerdos en terminaciòn en condiciones de bajas temperaturas. Ediciones INTA Anguil; 2018. Universidad Nacional de Río Negro. Argentina

[46] Büyükdeveci ME, Balcázar JL, Demirkale İ, Dikel S. Effects of garlic-supplemented diet on growth performance and intestinal microbiota of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. 2018;486:170-4.